一、FRα为何成为肿瘤精准治疗新靶点？
FRα由FOLR1编码，是分子量38-40 kDa的细胞表面糖蛋白，最初作为叶酸结合蛋白被发现，1991年被克隆为肿瘤相关抗原。FRα对还原叶酸及叶酸有很高亲和力，通过胞吞作用吸收叶酸，在胚胎发育中至关重要。FRα在正常细胞中几乎不表达，在实体瘤中有广泛高表达：间皮瘤72-100%，卵巢癌76-89%，三阴性乳腺癌35-68%，非小细胞肺癌14-74%。非恶性组织中仅肺部顶端支气管上皮细胞有一定比例表达。FRα除运送叶酸外，也是肿瘤细胞的"帮凶"。FRα转移到细胞核中充当转录因子，与顺式调节元件结合，直接调节癌细胞关键发育基因的表达。在癌细胞增殖、转移过程中，FRα起推波助澜作用。FRα在肿瘤中的限制性表达及生物学功能，使其成为极具潜力的治疗靶点。FRα伴随诊断抗体通过免疫组化检测肿瘤组织中FRα的表达水平，筛选靶向治疗优势人群。
二、FRα在肿瘤进展中发挥什么作用？
FRα与叶酸结合后，启动细胞内调节信号网络，调节非受体酪氨酸激酶PEAK1的磷酸化，促进ERK及STAT3的激活，二者都是调节肿瘤细胞生长、发育及分裂的关键信号。叶酸受体通过下调细胞间粘附分子E-钙粘蛋白，使癌细胞发生转移。肿瘤转移需要减少细胞黏附和增加运动能力，E-钙粘蛋白越少，肿瘤移动能力随之增强。理论上通过抑制FRα可以控制肿瘤转移及侵袭。FRα参与肿瘤浸润、转移及进展，并在恶性肿瘤中特异性表达，使之成为肿瘤治疗极具开发潜力的新靶点。FRα伴随诊断抗体用于检测FRα表达水平，评估患者从靶向治疗中的获益可能性。
三、FRα靶向治疗有哪些开发策略？
由于FRα在恶性肿瘤中特异性表达，小分子药物偶联物、单克隆抗体、双特异性抗体、CAR-T、抗体偶联药物及叶酸-细胞毒性药物偶联物等不同领域均有开发。小分子药物偶联物与叶酸偶联，用于FRα靶向。靶向FRα的疫苗用FRα mRNA改造的自体树突细胞通过T细胞介导，实现抗FRα免疫反应。CAR-T细胞识别FRα触发肿瘤细胞杀伤。单克隆抗体对FRα特异性识别，直接抑制导致肿瘤细胞死亡。抗体通过将表达FRα的肿瘤细胞与携带Fc受体的免疫效应细胞联系起来，通过产生ADCC及ADCP增强效应细胞活化和靶向中和功能。补体依赖性细胞毒性激活也是作用机制之一。
四、FRα抗体偶联药物为何脱颖而出？
ADC由靶向特异性抗原的单克隆抗体与小分子细胞毒性药物通过连接子链接而成，兼具传统小分子化疗的强大杀伤效应及抗体药物的肿瘤靶向性。FRα在单抗和小分子药领域相继失利后，却在ADC赛道杀出一条血路。ADC对抗原的识别导致ADC通过内吞途径进入细胞内，通过溶酶体降解后，有效载荷以生物活性形式释放并发挥作用，导致癌细胞死亡。FRα高表达患者是ADC治疗的优势人群。FRα伴随诊断抗体通过免疫组化筛选FRα高表达患者，指导ADC临床使用，提高治疗有效率，避免无效治疗及毒性暴露。
五、FRα伴随诊断抗体的判读标准是什么？
FRα免疫组化检测已获批作为伴随诊断，用于筛选适合接受FRα靶向ADC治疗的患者。判读标准为≥75%的肿瘤细胞呈现中至强强度的膜染色定义为FRα高表达，适合接受靶向治疗。判读需评估膜染色的完整性及强度，阳性细胞需呈现清晰的膜染色，胞质及核染色不计入。染色强度分为无染色、弱染色、中度染色及强染色四级。阳性细胞比例需计数至少100个肿瘤细胞中的膜阳性细胞百分比。判读标准化要求不同实验室间结果可比，需定期进行质控及熟练度测试。
六、使用FRα伴随诊断抗体需注意哪些关键问题？
FRα伴随诊断抗体用于免疫组化需优化抗原修复条件，推荐使用EDTA缓冲液高压修复。阳性对照设置必不可少，已知FRα高表达的卵巢癌组织应作为对照，确保染色体系有效。分析前变量包括组织固定时间、抗原修复条件及抗体孵育时间，均需严格标准化。固定时间过长或过短均可影响抗原检测，推荐固定时间6-72小时。判读时需区分膜染色与胞质背景，仅膜阳性计入阳性细胞。不同克隆号抗体可能产生差异，需选择经临床验证的克隆。质量控制需涵盖特异性、灵敏度及批间一致性。
